一、介紹
類器官培養(yǎng)技術(shù)是一種利用干細(xì)胞或腫瘤組織在體外三維(3D)微環(huán)境下進(jìn)行自組織培養(yǎng),形成具有一定空間結(jié)構(gòu)和功能的微型器官的技術(shù)。這些類器官能夠高度模擬真實(shí)器官的特征,包括組織學(xué)結(jié)構(gòu)和生理功能。培養(yǎng)方法主要包括浸沒式基質(zhì)膠培養(yǎng)、氣液界面培養(yǎng)和生物反應(yīng)器培養(yǎng)等。
1.1.儀器設(shè)備:
CO?培養(yǎng)箱、超凈工作臺、倒置顯微鏡、臺式離心機(jī)、水浴鍋/搖床、-80℃冰箱、冰盒。
眼科剪/鑷、移液器、15 mL離心管、100 μm濾篩、24孔低吸附培養(yǎng)板。
2.2.試劑耗材
培養(yǎng)基:選擇組織特異性培養(yǎng)基。
基質(zhì)膠:低因子、無酚紅型,需4℃過夜融化,操作全程冰上進(jìn)行[1]。
消化液:膠原酶(I/IV型)、胰蛋白酶。
其他:組織保存液、類器官凍存液(含DMSO)。
2.1 樣本處理
取材與保存:離體組織立即浸入4℃預(yù)冷組織保存液(含雙抗),運(yùn)輸時(shí)間≤72小時(shí)。
清洗剪碎:PBS(含雙抗)沖洗3次,去除血污;立體顯微鏡下剔除脂肪/壞死組織剪成1-3 mm3碎片,轉(zhuǎn)移至15 mL離心管。
組織消化:配制膠原酶+胰蛋白酶混合液,37℃預(yù)熱。 按組織體積1:4加入消化液[2],37℃搖床(120 rpm)消化20-60分鐘;每5分鐘取樣鏡檢,至細(xì)胞團(tuán)(5-50個(gè)細(xì)胞)出現(xiàn)時(shí)終止。
終止與過濾:加入3倍體積終止緩沖液(如含FBS的培養(yǎng)基);100 μm濾篩過濾,離心(300g,5分鐘)棄上清。
2.2 培養(yǎng)基配制
基礎(chǔ)培養(yǎng)基:選擇適合細(xì)胞生長的基礎(chǔ)培養(yǎng)基,需選擇添加以下成分:
生長因子:EGF(促進(jìn)增殖)[3]、Wnt3a(維持干細(xì)胞特性)[4]、Noggin(抑制分化)[5]、R-spondin1(增強(qiáng)Wnt信號)[6]。
小分子化合物:如Y-27632(ROCK抑制劑,減少細(xì)胞凋亡)[7]。
pH與滲透壓:嚴(yán)格校準(zhǔn)至7.4,避免影響細(xì)胞代謝。
2.3 基質(zhì)膠接種
細(xì)胞重懸:沉淀用預(yù)冷PBS清洗1次,按1×105[8]個(gè)細(xì)胞/50 μL基質(zhì)膠比例重懸。
點(diǎn)板固化:24孔板每孔點(diǎn)膠50 μL(避免氣泡);37℃培養(yǎng)箱靜置30分鐘,待膠凝固后加入500 μL培養(yǎng)基。
2.4 培養(yǎng)與觀察
培養(yǎng)條件:37℃、5% CO?,每2-3天換液(吸棄舊液,沿孔壁緩慢加入新培養(yǎng)基)。
形態(tài)監(jiān)測:初期(3-5天):類器官呈囊狀或?qū)嵭那蝮w;成熟期(10-14天):直徑200-500 μm[8],結(jié)構(gòu)致密。
3.1 收集與洗滌:
吸棄培養(yǎng)基,加入4℃預(yù)冷緩沖液(如PBS),吹打分散膠體。300g離心5分鐘,棄上清及基質(zhì)膠層;若分層不清,重復(fù)冷化步驟或棄上1/3懸液。
3.2 消化與分選:
加入消化液(37℃,2-3分鐘),吹打成2-10細(xì)胞團(tuán);加入5倍體積緩沖液終止,離心后按1:2-1:3比例接種。
4.1 凍存:
類器官直徑100-200 μm時(shí)(指數(shù)生長期)。收集類器官,加入凍存液(90% FBS+10% DMSO);梯度降溫(4℃→-20℃→-80℃→液氮)。
4.2 復(fù)蘇
快速解凍:37℃水浴1-2分鐘,PBS清洗2次;
重懸培養(yǎng):按原代步驟接種,初期培養(yǎng)基添加ROCK抑制劑。
參考文獻(xiàn)
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